航天失重效应模拟尾吊模型

大鼠、小鼠。多选用雄性。

1、实验耗材

伤湿止痛膏、医用橡皮膏

2、实验仪器和环境

模拟失重尾部悬吊实时监测的装置

图1尾吊装置图及软件界面图

（中国医学科学院药用植物研究所、中国航天员中心联合研制）

3. 实验方法

3.1造模方法

动物适应3-7后开始造模，将动物尾巴距尾根部约1cm处缠上伤湿止痛膏与医用橡皮膏，通过金属链条将其与尾吊仪相连。具体操作如下：将伤湿止痛膏剪成大鼠约长7cm，宽约1cm（小鼠长5cm,宽约0.5cm）的长条状，将其中间段1/3长度延长轴对叠，两头端1/3处粘在大鼠距尾根部约1cm处，使其成一个环形结构，将医用橡皮膏螺旋形包裹在其外部，避免滑脱。将一头带钩的金属链条钩住环状膏药，另一头连接尾吊仪微动开关的环形挂圈，根据需要调节链条长度，并用金属夹将链条固定。尾吊模型动物尾部悬吊，前肢着地，后肢离地，身体与水平面成30-60°。

图2 大鼠尾吊图

3.2、检测方法

根据模拟失重尾部悬吊实时监测装置使用规范调节仪器，开始检测，大鼠自由饮食饮水，全天24小时不间断造模、检测，造模时间依据实验目的而定，通常为14天。14天后进行行为学检测，行为学检测期间应保持大鼠处于造模的尾平/尾吊状态，在行为学检测时应尽量减少动物的非尾吊时间，取下后及时检测，检测完后及时尾吊。具体实验测试方法、检测模式和评价标准见实验方法。

4. 注意事项

4.1.尾吊会造成尾部的血液不循环，缠膏药时若使用力度不合适，易导致尾巴逐渐红肿、疼痛。尾吊时在缠尾部的膏药时注意掌握力度，适时调整。

4.2.尾吊动物多偏狂躁，取挂时应异常小心，取挂时候可以一只手握住动物身体，防止其转头，另一只手将其从尾吊挂钩上取下。

4.3.尾吊期间要保持尾吊环境的干净整洁、室内温湿度的适宜，以及室内的安静，以保证结果的真实可靠。

5. 模型分析指标

5.1 行为学检测

动物按相应分组在模拟失重尾部悬吊实时监测装置中造模3周，造模期间每天8: 00pm 提取当天被监控动物( 8: 00am ～ 12: 00am) 、( 2: 00pm ～ 6:00pm) 、( 8: 00am ～ 8: 00pm) 、( 8: 00pm ～ 8: 00am) 、24 h 等5个时段自主活动数据。同时，每周检测动物摄食饮水量和体重变化。摄食饮水量测定: 造模前一天和造模第7、14、21 天分别测定一次。测量当天上午8: 00 每只动物给予200g 饲料，200 mL 水，第二天同一时刻收集剩余饲料和饮水，摄食饮水量以食物饮水消耗绝对值来评定。体重变化测定: 在造模前一天和造模第7、14、21 天分别称量体重并计算体重变化率，体重变化率= ( 第N 周体重－ 实验前1 天体重) /实验前1 d 体重。

1. 尾吊对摄食饮水的影响

如表1所示，在实验开始前各组之间摄食饮水量均无统计学差异。造模3 周后各组大鼠摄食饮水量也无统计学差异。

2. 尾吊对体重的影响

如表2所示，大鼠体重在实验前无统计学差异，体重变化率在实验后1周出现显著性变化( P ＜0. 05) ，假尾吊组和尾吊组大鼠体重显著低于对照组( P ＜ 0. 05) ，这种差异持续到第3周，且有逐步增大的趋势。假尾吊组和尾吊组之间大鼠体重无统计学差异。

3. 不同时间段尾吊大鼠运动状态的变化

由图3所示，在各个时段对照组大鼠运动时间都少于假尾吊组和尾吊组; 假尾吊组和尾吊组大鼠运动时间无显著性差异，但在造模1 ～ 10d 假尾吊运动状态不稳定，个体差异也很大，10d 之后运动状态趋于稳定。